بررسی ساختار ژنتیک ماهی کفال طلایی (Liza aurata ) در تالابهای گمیشان و تالاب انزلی با روش مولکولی میکروستلایت

نوع مقاله: مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن، گروه شیلات و بیولوژی دریا

2 دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن، گروه شیلات و بیولوژی دریا، تنکابن، ایران

چکیده

ساختار ژنتیکی ماهی کفال طلایی Liza aurata در تالابهای گمیشان و انزلی با استفاده از 6 جایگاه میکروستلایت (Muce55 ،Muce37 ،Muso10،Muco16 ،Muso19 ،Muso22) بررسی گردید. در مجموع ٦٠ نمونه بالغ ماهی کفال از دو منطقه تالابهای گمیشان و انزلی جمع آوری شد. تمامی پرایمرهای مورد استفاده در طی واکنش زنجیره ای پلی مراز با موفقیت تکثیر شدند و چند شکل (پلی مورف) نشان دادند که از آنها برای تعیین تمایز ژنتیکی ماهی کفال طلایی استفاده شد. میانگین آللی (Na) در جایگاه‌ها 3/5 (با دامنه 3 تا 9 آلل) و در مناطق نمونه برداری در نمونه‌های تالاب گمیشان و انزلی به ترتیب 1/5 و 5/5 بود. در نمونه های هر دو منطقه آلل‌های اختصاصی دیده شد. میانگین هتروزیگوسیتی مورد انتظار و مشاهده شده به ترتیب در نمونه‌های تالاب گمیشان 721/0 و 153/0 و انزلی 747/0 و 328/0 محاسبه شد. تمامی جایگاه‌ها در بررسی تعادل هاردی وینبرگ (H-W) خارج از تعادل بودند (001/0>P). میانگین ضریب خویشاوندی ( Fisو Fit) در 6 جایگاه میکروستلایت در هر دو جمعیت مثبت بود. میزان شاخص تمایز (Fst) و جریان ژنی (Nm) بر اساس فراوانی آللی به ترتیب 113/0 و 97/1 محاسبه شد. بر اساس تست AMOVA، شاخص‌های تمایز Fst و Rst تفاوت معنی‌داری بین جمعیت‌ها نشان دادند (01/0P≤). میزان فاصله ژنتیکی نیز نشان دهنده تمایز ژنتیکی بین جمعیت‌های مورد مطالعه بود. نتایج این بررسی نشان می‌دهد که جمعیت‌های متمایز ژنتیکی از ماهی کفال طلایی در جنوب دریای خزر، در مناطق مورد بررسی (تالابهای گمیشان و انزلی) موجود است.

کلیدواژه‌ها

موضوعات


Alarcon, J.A., Magoulas, A., Georgakopoulos, T., Zouros, E. and Alvarez, M.C. 2004. Genetic comparison of wild and cultivated European populations of the gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquacult. 230: 65-80.

Balloux, F. and Lugon-Moulin, N. 2002. The estimate of population diffrention with microsatellite markers. Mol Ecol. 11: 155-165.

Bataillon, T. M., David, J. L. and Schoen, D. J. 1996. Neutral genetic markers and conservation: simulated Germplasm collections. Genet. 144:409-417.

Beardmore, J.A., Mair, G.C. and Lewis, R.I. 1997. Biodiversity in aquatic systems in relation to aquaculture. Aquacult Res. 28: 829– 839.

Bassam, B. J., Caetano-Anolles, G. and Gressoff, G.M. 1991. Fastandsensitive silver staning of DNA in polyacrylamide gels. Annul. Bioche. 84: 680-683.

Chen, L., Li, Q. and Yang, J. 2008. Microsatellite genetic variation in wild and hatchery populations of the sea cucumber (Apostichopus japonicas selenka) from northern China. Aquat. Res. 39: 1541-1549.

Cui, J. Z., Shen, X. Y., Yang, G. P., Gong, Q. L. and Gu, Q. Q. 2005. Characterization of microsatellite DNAs in Takifugu rubripes genome and their utilization in the genetic diversity analysis of T. rubripes and T. pseudommus . Aquacult. 250: 129– 137.

Dewoody, J. A. and Avise, J. C. 2000. Microsatellite variation in Marine, freshwater and anadramous fishes compared with other animals. Fish Biol. 56: 461-473.

Excoffier, L., Laval G. and Schneider, S. 2005. Arlequin ver. 3.0: An integrated software package for population genetics data analysis. Evol. Bioin. Online. 1: 47-50.

Frankham, R. 2008. Genetic adaptation to captivity in species conservation programs. Mol. Ecol. 17: 325-333.

Ghodsi., Shabani, A. and Shabanpour, B. 2011. Genetic diversity of Liza aurata (Risso, 1810) in the coastal regions of Golstan province, using microsatellite marker. Taxonomy and Biosystematics. 6: 35-46.

Hakansson, J. and Jensen, P. 2005. Behavioral and morphological variation between captive

populations of red junglefowl (Gallus gallus) possible implications for conservation. Biol. Cons. 122: 431–439.

Jamalzad, F. 2000. Determination of the sensitivity of Anzali wetland areas using Geographic Information System (GIS), MSc thesis, Faculty of Environment, Tehran University. 52P.

Khatibi, N. 2005. Gomishan International Wetland threatened oil schemes. Report the Center of the Earth Watchers. http://www.earthwatchers.org/gomishan.html.

Lucentini, L., Palomba, A., Lancioni, H., Gigliarelli, L., Sgaravizzi, G., Natali, M. and Panara, F. 2009. Temporal changes and effective population size of an Italian isolated and supportive-breeding managed northern pike (Esox Lucius) population. Fish. Res. 96:139-147.

Majnouniyan, H. 1998. Division and Conservation of Wetlands (Function and Value). Environment Organization Press, P: 176.

Miggiano, E., Lyons, R. E., Li, Y., Dierens, L. M., Crosetti, D. and Sola, L. 2005. Isolation and Characterization of microsatellite loci in the striped mullet, Mugil cephalus. Mol. Ecol. 5: 323-326.

Nei, M. 1978. Estimation of average heterozigosity and genetic distance from small number of individuals. Genetics. 89: 583-590.

Paetkau, D., Calvert, W., Stirling, I. and Strobeck, C. 1995. Microsatellite analysis of population structure in Canadian polar bears. Mol. Ecol. 4: 347-354.

Peakall, R. and Smouse, P.E. 2009. GenAlEx 6: Genetic Analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. The Australian National University, Canberra, Australia. Available at: http://www.anu.edu.au/BoZo/GenAlEx/

Razavi Sayad, B. 2000. Management reserves of the Caspian marine economy bony fishes, the first National Conference on proper exploitation of fish stocks, fisheries organization of Mazandaran, Babolsar

Xu, G., shao, Ch., Liao, X., Tian, Y., and Chen, S. 2009. Isolation and characterization of polymorphic microsatellite loci from so-iuy mullet (Mugil soiuy Basilewsky 1855). Cons. Genet. 10: 653-655.

Xu, T. j., Sun, D. Q., Shi, G. and Wang, R.X. 2010. Development and characterization of polymorphic microsatellite markers in the gray mullet (Mugil cephalus). GMR. 9: 1791-1795

Wright, S., 1978. Evolution and the Genetics of Population, Variability Within and Among Natural Populations. The University of Chicago Press, Chicago.

Zebardast, L. and Jafari, H. 2011. Use of Remote Sensing in Monitoring the Trend of Changes of Anzali Wetland in Iran and Proposing Environmental Management Solution. Journal of environmental studies. 37(57): 1-8.